組織細胞甘油酶法測定試劑盒    E1012

 

描述：甘油是甘油三酯的水解產物。與游離脂肪酸一樣，甘油含量是甘油三酯水解反應的可靠檢測指標，但檢測更加方便。本試劑盒采用優(yōu)化步驟，能夠檢測實體組織、細胞中的甘油含量，線性范圍為10-1200μmol/L。

 

原理：在ATP存在下甘油被甘油激酶磷酸化為3-磷酸甘油，再被甘油磷酸氧化酶氧化產生過氧化氫；在過氧化物酶作用下生色底物轉化為苯醌亞胺，其光密度值與甘油濃度成正比。

 

適用范圍：測定實體組織、細胞中的甘油濃度。

 

組成 (105次微板測定或30次1 ml比色杯測定)：

(1)    裂解液 50 ml   

(2)    R1試劑 16 ml

(3)    R2試劑  4 ml    

(4)    4 mmol/L甘油標準品1 ml

4 oC保存  6個月有效

 

所需設備：酶標儀、生化分析儀或721、722型可見光分光光度計。最佳工作波長550nm，如無此波長建議優(yōu)先選用570nm、次選530、490nm。

 

一 組織細胞裂解

細胞(包括分化的脂肪細胞)裂解：

消化、離心收集細胞?；蛑苯釉谂囵B(yǎng)皿內裂解。通常6孔板單孔約2x10⁶個細胞，75cm²瓶約1x10⁷細胞。按比例每1~2 x 10⁶細胞加0.1ml裂解液，震蕩或渦旋裂解后，靜置10分鐘。

 

動物組織裂解：

切記要預先將新鮮組織剪切稱重后再進行保存。組織凍存后再進行解凍、剪切、稱重可能會產生嚴重的測量誤差。離心管精確稱重，加入組織塊后再稱重，二者相減(即減量稱重法)計算組織重量(約100mg)。強烈建議按比例每1mg組織加10μl裂解液以減少樣品間蛋白和脂質含量變異而產生的誤差。（注意；裂解液用量在1ml或更多可保證有效的裂解與脂質提?。Ｓ秒妱痈咚賱驖{器或手動玻璃勻漿器破碎組織。（不推薦超聲方法，因其不能完全和均勻破碎。應根據預實驗調整初始的組織細胞加入量），而后，靜置10分鐘。

 

二. 裂解液處理：

1.    取適量上清液轉移到1.5ml離心管中，進行步驟2的操作。余下的裂解液可用BCA法蛋白定量試劑盒(#P1511)進行蛋白定量或－20oC儲存。

2.    70oC 加熱10分鐘滅活脂肪酶，可能出現絮狀沉淀。

3.    室溫5000rpm離心5分鐘，上層清液即可用于酶學測定。

 

三 工作溶液配制：按4:1比例，取4 ml試劑R1與1 ml試劑R2混合即可，立即使用或4oC保存<1天，變色棄去。（注意：謹防來源不明但容易發(fā)生的甘油污染，可來自操作者本人或標準品液體微粒濺射等。）

 

四 標準品稀釋：用蒸餾水、生理鹽水或與樣品緩沖液一致的液體，將4 mM甘油標準品倍比稀釋為1000、500、250、125、62.5、31.25、15.625、7.8125 μmol/L，通常取其中4~6管即可，注意設置0濃度對照反應管。

 

五 甘油測定

1.    參見下表加樣。待測樣品體積10μl，多加可能會抑制反應。

2.    37oC或25oC反應 10分鐘。反應平衡后顏色在60分鐘內穩(wěn)定。

3.    先用蒸餾水+工作液的空白管調零，然后測定各管OD值。

4.    繪制標準曲線并計算甘油濃度。

附Excel作圖步驟：各標準管OD值為y軸，標準品濃度為x軸。(1)鼠標左鍵圈住數據，點擊做圖向導，選擇-散點圖-，點擊-完成-。(2)鼠標右鍵點圖上的某一點，點擊-添加趨勢線-，點擊-選項-，點擊-顯示公式-和-R²值-。

5.    以每mg蛋白濃度或細胞數校正甘油含量。

加樣表（可對樣品和工作液比例進行微量調整）

 

說明：

1. 維生 素C>0.18g/L、血紅蛋白>2g/L、膽紅素>0.25g/L、二硫蘇糖醇、巰基乙醇、高濃度EDTA干擾測試。

2. 紅細胞糖酵解時合成磷酸甘油影響測定。

 

參考文獻：

1.  Trinder, P. (1969). Ann. Clin. Biochem. 6: 24 – 27.

2.  Barham D and Trinder P. (1972). Analyst 97: 142 – 1